肝细胞癌组织p53凋亡刺激蛋白2表达及临床意义

沈凯 刘彤

原发性肝癌是来源于肝细胞或肝内胆管上皮细胞的恶性肿瘤,其中肝细胞癌是原发性肝癌最常见的类型,占85%~90%[1-2]。肝细胞癌的发病率和病死率均较高,目前治疗肝细胞癌的手段包括手术切除、射频消融、经导管化疗栓塞、放化疗、分子靶向药物等,但患者的预后仍不容乐观,5年生存率为5%~30%[3-4]。因此,探讨肝细胞癌发病的分子机制、发现新的肝细胞癌标志物有助于疾病的早期诊治。研究表明,p53凋亡刺激蛋白2(apoptosis-stimulating of p53 protein 2,ASPP2)在多种人类恶性肿瘤的发病中起重要作用,通过调控野生型p53的功能可起到促凋亡作用,但目前国内关于ASPP2在肝细胞癌发病中的作用仍停留在动物实验和细胞实验阶段[5-6],尚缺乏ASPP2与肝细胞癌发病关系的临床证据。因此,本研究以接受手术切除治疗的肝细胞癌患者为对象,探讨肝细胞癌组织ASPP2表达及临床意义。

1.1 对象 选取2016年6月至2019年6月在首都医科大学附属北京同仁医院接受手术切除治疗的80例肝细胞癌患者为研究对象,其中男45例,女35例;
年龄35~62(49.85±8.83)岁。纳入标准:(1)经术后病理诊断为肝细胞癌;
(2)临床病例资料和术后随访资料完整;
(3)肝细胞癌组织和癌旁正常组织样本完整。排除标准:(1)术前接受过放化疗;
(2)既往有其他恶性肿瘤史;
(3)合并除乙肝外的其他类型肝炎。本研究经本院医学伦理委员会审查通过,所有患者签署知情同意书。

1.2 方法

1.2.1 ASPP2 mRNA表达水平检测 采用qRT-PCR法。取肝细胞癌组织及癌旁正常组织,按照试剂盒说明书进行总RNA提取、反转录合成cDNA及qRT-PCR检测。在qRT-PCR仪上完成PCR反应,得到ASPP2和β-actin的循环曲线及循环阈值,以β-actin为内参,按照公式2-ΔΔCt计算 ASPP2 mRNA表达水平。

1.2.2 ASPP2蛋白表达水平检测 采用免疫组化染色法。取肝细胞癌组织及癌旁正常组织制作病理切片,按照试剂盒说明书进行ASPP2免疫组化染色,在显微镜下观察并对阳性染色百分比和染色强度进行评分。阳性染色百分比评分标准:阴性为0分,1%~25%为1分,>25%~50%为2分,>50%~75%为3分,>75%~100%为4分;
染色强度评分标准:阴性为0分,弱阳性为1分,中度阳性为2分,强阳性为3分。计算阳性染色百分比评分与染色强度评分的乘积,总评分0~5分为ASPP2蛋白低表达,6~12分为ASPP2蛋白高表达。

1.2.3 X连锁凋亡抑制蛋白(X-linked inhibitor of apoptosis protein,XIAP)、p53蛋白表达水平检测 采用Western blot法。取肝细胞癌组织,使用组织裂解液进行裂解,12 000 g、4℃离心10 min后收集上清液,采用BCA法检测上清液蛋白浓度,根据检测结果将含有30 μg蛋白的上清液样本用于Western blot检测。经聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白后,电转移至硝酸纤维素膜,5%脱脂牛奶封闭硝酸纤维素膜1~2 h,用XIAP一抗(1∶1 000稀释)、p53一抗(1∶1 000稀释)、β-actin一抗(1∶5 000稀释)4℃孵育过夜;
次日用辣根过氧化物酶二抗(1∶5 000稀释)孵育硝酸纤维素膜1 h,最后在凝胶成像系统内成像得到蛋白条带,根据条带灰度值计算XIAP、p53蛋白表达水平。

1.2.4 术后随访 术后采用门诊或住院复查、电话回访等方式进行随访,随访时间截至2021年3月31日,主要随访内容为总生存情况和无病生存情况。

1.3 统计学处理 采用SPSS 21.0统计软件。符合正态分布的计量资料以表示,组间比较采用两独立样本t检验;
不符合正态分布的计量资料以M(P25,P75)表示,组间比较采用Mann-Whitney U检验。计数资料组间比较采用χ2检验。绘制Kaplan-Meier生存曲线,计算累积无病生存率和5年总生存率,组间比较采用log-rank检验。P<0.05为差异有统计学意义。

2.1 肝细胞癌组织及癌旁正常组织ASPP2表达水平比较 肝细胞癌组织ASPP2主要表达于细胞质和细胞核,见图1。肝细胞癌组织ASPP2 mRNA表达水平、蛋白高表达率和蛋白表达评分均明显低于癌旁正常组织,差异均有统计学意义(均P<0.05),见表1。

表1 肝细胞癌组织及癌旁正常组织ASPP2表达水平比较

图1 肝细胞癌组织及癌旁正常组织p53凋亡刺激蛋白2蛋白表达(A:肝细胞癌组织;
B:癌旁正常组织;
免疫组化染色,×100)

2.2 原发性肝癌组织ASPP2蛋白表达与临床病理特征的关系 原发性肝癌组织ASPP2蛋白表达与病理分期、临床分期、脉管浸润等有关(均P<0.05),与性别、年龄、HBV感染、肝硬化、甲胎蛋白水平、肿瘤数量、包膜侵犯等均无关(均P>0.05),见表2。

表2 肝细胞癌组织ASPP2蛋白表达与临床病理特征的关系[例(%)]

2.3 肝细胞癌组织ASPP2蛋白表达与患者预后的关系 ASPP2蛋白高表达患者累积无病生存率和累积5年总生存率均明显高于ASPP2蛋白低表达患者,差异均有统计学意义(均P<0.05),见图2。

图2 ASPP2蛋白高表达与低表达患者的Kaplan-Meier生存曲线(A:无病生存率;
B:5年总生存率)

2.4 肝细胞癌组织ASPP2蛋白表达与XIAP、p53蛋白表达的关系 ASPP2蛋白高表达的肝细胞癌组织XIAP蛋白表达水平明显低于ASPP2蛋白低表达的肝细胞癌组织,而p53蛋白表达水平明显高于ASPP2蛋白低表达的肝细胞癌组织,差异均有统计学意义(均P<0.05),见图3和表3。

表3 肝细胞癌组织ASPP2蛋白表达与XIAP、p53蛋白表达的关系

图3 不同ASPP2蛋白表达的肝细胞癌组织XIAP、p53蛋白表达的电泳图

肝细胞癌的恶性程度高、临床预后差、5年生存率低,目前已知与肝细胞癌有关的基因包括p53、乙醛脱氢酶2、醌氧化还原酶1等,但具体发病机制至今仍未阐明。甲胎蛋白、α-L-岩藻糖肝酶、磷脂酰肌醇蛋白聚糖-3等是筛查肝细胞癌常用的标志物[7-8],但诊断疾病的灵敏度均不佳,多数患者在病情进展至中晚期才会出现血清肿瘤标志物异常升高,目前尚缺乏能够早期诊断肝细胞癌的标志物。因此,探讨肝细胞癌的发病机制不仅有助于发现疾病新的治疗靶点,也有助于发现疾病诊断及病情评估新的标志物。

ASPP家族包括ASPP1、ASPP2、ASPP3,其中ASPP2在消化系统恶性肿瘤发病中的作用受到广泛关注。Yin 等[9]、Liu 等[10]、Buti等[11]分别在结直肠癌、食管癌、胃癌患者肿瘤组织中检测到ASPP2表达降低。ASPP2具有广泛的促凋亡作用,能够显著增强抑癌基因p53诱导的促凋亡效应。膀胱癌[12]、子宫内膜癌[13]、肾癌[14]相关研究证实,上调ASPP2表达能明显促进癌细胞凋亡,而抑制ASPP2表达能明显抑制癌细胞凋亡。至今,ASPP2在肝细胞癌发病中作用的研究仍停留在细胞实验和动物实验阶段。Liang等[15]、Chen等[16]的细胞实验证实,敲除或敲低ASPP2能明显促进肝细胞癌细胞的存活和增殖;
Wang等[17]的动物实验证实,敲低ASPP2可促进肝细胞癌移植瘤的形成。本研究通过qRT-PCR和免疫组化染色对临床样本进行检测发现,肝细胞癌组织中ASPP2表达水平明显低于癌旁正常组织,这表明ASPP2的低表达与肝细胞癌的发病有关。

ASPP2是细胞凋亡的调控基因,在肝细胞癌发病过程中,细胞凋亡异常与肿瘤病理进程密切相关[18-19]。本研究探讨ASPP2蛋白表达与临床病理特征的关系发现,ASPP2蛋白低表达的肝细胞癌组织病理分期及临床分期更高,且更易发生脉管浸润,这表明ASPP2蛋白低表达与肝细胞癌的病理进展有关,与其介导的促凋亡效应吻合。进一步探讨ASPP2蛋白表达与预后的关系发现,肝细胞癌组织ASPP2蛋白低表达患者累积无病生存率和累积5年总生存率均较低,这表明ASPP2低表达与肝细胞癌患者预后不良有关。

目前关于ASPP2促进肝细胞癌细胞凋亡的认识不断在深入。Yang等[20]研究证实,ASPP2对肝细胞癌细胞促凋亡基因p53的表达和抗凋亡基因XIAP表达具有调控作用。本研究利用已有的肝细胞癌组织样本对ASPP2下游的p53、XIAP蛋白表达进行分析,结果显示与ASPP2蛋白高表达的肝细胞癌组织比较,ASPP2蛋白低表达的肝细胞癌组织XIAP蛋白表达水平升高,而p53蛋白表达水平明显降低,提示肝细胞癌发病过程中低表达的ASPP2可能通过增加XIAP表达、降低p53表达的方式来发挥抑制癌细胞凋亡的作用。但以上结果仍需今后更多细胞实验或动物实验来验证。

综上所述,肝细胞癌组织ASPP2低表达与病理进展、预后不良有关,其作用机制可能与调控XIAP、p53有关。本研究结果为今后深入认识肝细胞癌的发病机制、发现肝细胞癌新的标志物提供了思路。

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